준비 및 사양
외관 | 황색 무정형 분말, 동결건조 | |
---|---|---|
GradeⅢ 1.5U/mg-solid 이상 | ||
오염물질 | ATPase | ≤5.0×10-2% |
GOT, GPT | ≤5.0×10-2% | |
안정제 | 설탕, 유행 td> |
속성< /h2>안정성 −20&에서 안정적 #x2103; 최소 1년 동안 (그림 1) 분자량 대략. 260,000 등전점 4.3 미카엘리스 상수 3.4×10-4 M(피루브산) 억제제 Fe++,Zn++,Cu++,Ag+,Hg++ 최적 pH 5.7 (그림 2) 최적 온도 65℃ (그림 3) pH 안정성 pH 5.7−6.5 ( 25℃, 20시간) (그림 4) 열 안정성 < td>45℃ 미만 (pH 6.0, 15분) (그림 5)기질 특이성 (표 1) 다양한 화학물질의 영향 (표 2)
안정성 | −20&에서 안정적 #x2103; 최소 1년 동안 (그림 1) |
---|---|
분자량 | 대략. 260,000 |
등전점 | 4.3 |
미카엘리스 상수 | 3.4×10-4 M(피루브산) |
억제제 | Fe++,Zn++,Cu++,Ag+,Hg++ |
최적 pH | 5.7 (그림 2) |
최적 온도 | 65℃ (그림 3) |
pH 안정성 | pH 5.7−6.5 ( 25℃, 20시간) (그림 4) |
열 안정성 | < td>45℃ 미만 (pH 6.0, 15분) (그림 5)|
기질 특이성 | (표 1) |
다양한 화학물질의 영향 | (표 2) |
애플리케이션
이 효소는 임상 분석에서 피루브산, GOT, GPT의 효소 측정에 유용합니다.
분석
< div class="mb30">원칙
퀴노네이민 염료의 외관은 분광광도법으로 550nm에서 측정됩니다.
단위 정의
아래 설명된 조건에서 1개 단위는 분당 1마이크로몰의 과산화수소(퀴논이민 염료의 0.5마이크로몰)를 형성합니다.
< /div>방법
시약
A. 피루브산 용액 | 0.3M[피루브산 378mg・K염(MW=126.15)/H2O 10ml] |
---|---|
B. K-인산염 완충액, pH 5.9 | 0.15M |
C. 4-아미노안티피린 용액 | 0.15%(4-아미노안티피린 150mg/H2O 100ml) |
디. EHSPT(TOOS) 용액 | 0.3%[EHSPT(N-에틸-N-(2-하이드록시-3-설포프로필)-m-톨루이딘) 300mg/H2 100mlO] |
E. TPP 용액 | 3mM[TPP(티아민 피로인산염) 13.8mg(MW=460.77)/H2O 10ml] |
0.15mM[FAD 1.3mg・2Na 염(MW=865.55)/H2O 10ml] | |
15mM[EDTA 590mg・2Na 염(MW=394.22)/H2O 100ml] | |
H. MgSO4 용액 | 0.15M[MgSO4 3.4g・7H2O(246.48)/H 100ml 2O] |
I. 퍼옥시다제 용액 | 50U/ml[퍼옥시다제 45mg(110푸르푸로갈린 단위/mg)/H2O 100ml] |
J. 효소 희석제 | 50mM K-인산 완충액, pH 5.7 |
절차
1.다음 작업 용액을 갈색 병에 준비하여 보관하세요. 얼음 위에.
10ml | K-인산염 완충액, pH 5.9 | (B) |
---|---|---|
2ml | 4-아미노안티피린 용액 | (C) |
2ml | EHSPT 솔루션 | (D) |
2ml | TPP 솔루션n | (E) |
2ml | FAD 용액 | (F) | tr>
2ml | EDTA 용액 | (G) |
2ml | MgSO4 용액 | (H) |
3ml | 과산화효소 | (I) |
분석 혼합물의 농도 | |
---|---|
피루브산 | 48mM |
K-인산염 완충액 | 50mM | tr>
4-아미노안티피린 | 0.48mM |
EHSPT | 0.58mM |
TPP | 0.19mM td> |
FAD | 0.01mM |
EDTA | 0.97mM |
MgSO4 | 9.7 mM |
과산화효소 | 약 4.8 U/ml |
2.작업 용액 2.5ml를 피펫으로 옮깁니다. 큐벳(d=1.0cm)에 피루브산 용액(A) 0.5ml를 넣고 37°C에서 평형화시킨다. 5분 정도.
3.효소 용액 0.1ml*를 넣고 가볍게 뒤집어 섞으세요. p>
4.온도가 37℃인 분광 광도계에서 물에 대해 3~4분간 550nm에서 광학 밀도의 증가를 기록하고 ℃ #x394;곡선의 초기 선형 부분으로부터 분당 OD(ΔOD 테스트).
동시에, 동일한 방법을 사용하여 블랭크율(ΔOD 블랭크)을 측정합니다. 효소 용액 대신 효소 희석액을 첨가하는 것을 제외하고는 테스트하십시오.
*효소 제제를 얼음처럼 차가운 효소 희석제(J)에 녹인 다음, 동일한 버퍼로 0.1−0.5U/ml로 줄이고 얼음에 보관하세요.
계산
활동량은 다음 공식을 사용하여 계산할 수 있습니다:
활동량(U/ml) =< /p>
ΔOD/min (ΔOD 테스트−ΔOD 공백)×Vt×df< /p>
36.88×1/2×1.0×Vs
= x394;OD/min×1.68×df
체중 활성도(U/mg) = (U/ml)×1/C
Vt | : 총 용량(3.10ml) |
Vs | : 시료량(0.10ml) |
36.88 | : 분석 조건에서 퀴논이민 염료의 밀리몰 흡광계수(cm2 /마이크로몰) |
1/2 | : H2 1몰이 O2는 0.5몰의 퀴논이민 염료를 생성합니다. |
1.0 | : 빛의 경로 길이(cm) |
df | : 희석 인자 |
C | : 용해 시 효소 농도(c mg/ml) |
참조
1) LPHager, DMGeller 및 F.Lipman; Fed.Proc., 13, 734(1954).
2) B.Sedewitz, KHSchleifer 및 F.Gotz; J.Bacteriol,160, 273(1984).
3) B.Sedewitz, KHSchleifer 및 F.Gotz; J.Bacteriol,160, 462(1984).
표 1. 피루베이트 산화효소의 기질 특이성
- < /li>
기질(50mM) 상대활성도(%) 피루브산 100 α-케토부티레이트 5.8 tr>α-케토글루타레이트 0 옥살로아세트산 0 < /tr>DL-락테이트 0 기판(50mM) 상대활성도(%) 아세트산 0 아세토아세트산 0 L-알라닌< /th> 0 L-아스파르트산염 0
표 2. Effect of Various Chemicals on Pyruvate oxidase
[The enzyme dissolved in 50mM K-phosphate, pH 6.0 (10U/ml) was incubated with each chemical at 25Ȑ /p>
Chemical Concn.(mM) Residual
activity( %)None - 100 Metal salt 2.0 MgCl2 96 CaCl2 93 Ba(OAc)2 < td>97 < tr>FeCl3 8.4 CoCl2 84 MnCl2 sub> 76 ZnSO4 48 Cd(OAc)2 86 NiCl2 119 CuSO< sub>4 0.9 Pb(OAc)2 td> 33 AgNO3 0 HgCl2 0 PCMB 1.0 66 MIA 2.0 96 Chemical Concn.(mM) Residual
activity(%)NaF 2.0 100 NaN3 20 94 EDTA 5.0 107 o-Phenanthroline 2.0 97 α,α′-Dipyridyl 1.0 95 Borate 50 102 IAA 2.0 102 NEM 2.0 104 Hydroxylamin 2.0 98 Triton X-100 0.10% 143 Brij 35 0.10% 133 Tween 20 0.10% 146 Span 20< /td> 0.10% 121 Na-cholate 0.10% 116 SDS 0.05% 85 DAC 0.05% 53
Ac, CH3CO; PCMB, p-Chloromercuribenzoate; MIA, Monoiodoacetate; EDTA, Ethylenediaminetetraacetate;
IAA, Iodoacetamide; NEM, N-Ethylmaleimide; SDS, Sodium dodecyl sulf chloride.
Fig.1. Stability (Power form)
(kept under dry conditions)
그림 .2. pH-Activity
(37℃ in 50mM K-phosphate buffer)
Fig.3. Temperature activity
(in 50mM K-phosphate buffer, pH5.7)
Fig.4. pH-Stability
25℃,20hr-treatment with 50mM buffer solution (contg. 10mM MgSO4. 10μM FAD, 0.2mM TPP):pH4.0-6.0, acetate;pH5.7-8.0 K-phosphate; pH7.5-9.0 ,Tris-HCI
Fig.5. Thermal stability
15min-treatment with 50mM K-phosphate buffer(cong. 10mM MgSO4. 10& #x3BC;M FAD, 0.2mM TPP), pH6.0. enzyme concn.:10U/ml
활성 측정법(Japanese)
1. 원리
2. 정의
하기 조건으로 1분간에 1마이크로몰의 H2O2를 생성하는 효소량을 1단위(U)로 한다.
3. 시약
- 0.3M 피루브산 수용액〔378mg의 피루브산·K염(MW=126.15)을 10ml의 증류수에 용해시킨다. ]
- 0.15M 인산칼륨 완충액, pH 5.9
- 0.15% 4-AA 수용액(150mg의 4-아미노안티피린을 100ml의 증류수에 용해한다.)< /li>
- 0.3% EHSPT(TOOS) 수용액[300mg의 EHSPT를 100ml의 증류수에 용해]
- 3.0mM TPP 수용액[13.8mg의 TPP(MW=460.77)를 10ml의 증류수에 용해한다. ]
- 0.15mM FAD 수용액 [1.3mg의 FAD · 2Na 염 (MW = 865.55)을 10ml의 증류수에 용해시킨다. ]
- 15mM EDTA 수용액 [590mg의 EDTA · 2Na 염 (MW = 394.22)을 100ml의 증류수에 용해시킨다. ]
- 0.15M MgSO4 수용액 [3.4g의 MgSO4·7H2O(MW=246.48)를 100ml의 증류수에 용해시킨다. ]
- 50U/ml POD 수용액 [45 mg 퍼옥시다제 (POD)(110 풀프로갈린 단위/mg)를 100 ml 증류수에 용해시킨다. ]
효소 용액: 효소 표품을 미리 빙냉한 50mM K-인산 완충액, pH 5.7로 용해하고, 분석 직전에 같은 완충액으로 0.1-0.5U/ml로 희석한다.
4. 절차
1. 아래 반응 혼합물을 준비 한다(갈색병에서 빙냉 보존).
10ml | K-인산 완충액 | < td class="w20p">(B)|
2ml | 4-AA 수용액 | (C) |
2ml | EHSPT 수용액 | (D) |
2ml | < td>TPP 수용액(E) | |
2ml | FAD 수용액 | (F) td> |
2ml | EDTA 수용액 | (G) |
2ml | MgSO4수용액 | (H) |
3ml | POD 수용액 td> | (I) |
2. 반응 혼합물 2.5ml를 큐벳(d = 1.0cm)로 채취하고, 피루브산 수용액 (A) 0.5ml를 첨가하고, 약 5 분간 예비 가온한다.
3. 효소 용액 0.1ml를 첨가하고 완만하게 혼합한 후, 물을 대조군으로 37℃로 제어된 분광광도계 550nm의 흡광도 변화를 3~4분간 기록하고, 그 초기 직선 부분으로부터 1분간 당의 흡광도 변화를 구한다(ΔODtest).
4. 맹검은 반응 혼합액으로 효소 용액 대신 효소 희석액 (50 mM K-인산 완충액, pH 5 .7)을 0.1ml 첨가하고, 상기와 같이 조작하여 1 분당 흡광도 변화를 구한다 (ΔODblank).
5. 수식
U/ml= p>
ΔOD/min (ΔOD test−ΔOD blank)×3.1(ml)× 희석 배율
36.88×1/2×1.0×0.1(ml)
=ΔOD/min×1.68×희석 배율 | |
U/mg | = U/ml×1/C |
36.88 | : Quinoneimine 염료의 상기 측정 조건 하에서의 밀리몰 분자 흡광 계수(cm2< /sup>/micromole) |
1/2 | : 효소 반응에서 생성된 H2O2 의 1분자로부터 형성하는 Quinoneimine 색소는 1/2분자인 것에 의한 계수. |
1.0 | : 광로 길이(cm) |
C | : 용해시 효소 농도 (c mg/ml) |