준비 및 사양
성상 | 황색 무정형 분말, 동결건조 | |
---|---|---|
활동 | GradeⅢ 15U/mg-solid 이상 | |
오염물질 | 젖산산화효소 | ≤2.0×10-4% |
아데노신 트리포스파타제 | ≤2.0×10-4% | |
안정제 | 아미노산, 유행 |
속성
안정성 | −20℃에서 안정적 최소 1년 동안(그림 1) |
---|---|
분자량 | 대략. 67,000(SDS-PAGE 기준) |
등전점 | 4.6±0.1 |
1.3×10-3M | |
억제제 | SH- 시약, 이온 세제, 금속 이온 등 |
최적 pH | 6.0−7.0( 그림 3) |
최적 온도 | 45℃(그림 .4) |
pH 안정성 | 4.5−8.5(25℃, 20시간)(그림 5) |
열 안정성 | 45℃ 미만 (pH6.5,15분)(그림 6) |
다양한 화학물질의 영향 | (표 1) |
응용
이 효소는 지질단백질 리파제(LPL-311, 와 결합하여 트리글리세리드를 효소적으로 측정하는 데 유용합니다. LPL-314) 및 글리세로키나제(GYK-301, GYK-311)를 임상 분석에 사용합니다.
분석
원리
퀴노네이민 염료의 외관은 분광광도법으로 555nm에서 측정됩니다.
단위 정의
아래 설명된 조건에서 1개 단위는 분당 1마이크로몰의 과산화수소(퀴논이민 염료의 0.5마이크로몰)를 형성합니다.
< /div>방법
시약
A. D,L-α-글리세로인산염 용액 | 1.5M[D,L-α-글리세로인산염(이나트륨염,MW=324.17) 48.63g을 칭량하여 용해시킨다. 60ml의 H2O에 넣고 25℃에서 pH를 6.5±0.05로 조정한 후; with 4.0N HCl, H2O로 최대 100ml 충전] (0−4℃에서 보관하면 2주 동안 안정함) | |
---|---|---|
B. PIPES-NaOH 완충액, pH 6.5 | 0.5M [15.12g의 PIPES(MW=302.36) 무게, 60ml의 H2O에 현탁하고 10N으로 용해 NaOH. 25℃에서 pH를 6.5±0.05로 조정한 후; 10N NaOH로 H2O로 100ml까지 채움](0−4℃에서 보관하면 2주 동안 안정함) | |
C. 4-AA 용액 | 28mM [569mg 4-아미노안티피린(MW=203.25)/100ml의 H2O](4& #x2103; 갈색병에 들어있음) | |
D. EHSPT(TOOS) 용액 | 20mM [591mg N-에틸-N-(2-하이드록시-3-설포프로필)-m-톨루이딘(MW=295.3)/100ml H2O](갈색병에 담아 4도에 보관하면 일주일간 안정함) | |
E. 과산화효소 용액 | 0.05% [과산화효소 50mg(110 퍼푸로갈린 단위/mg)/H2O 100ml(신선하게 준비해야 함) | < /tr>|
F. 효소 희석제 | 20mM PIPES-NaOH 완충액, pH 6.5 contg. 0.5M NaCl |
절차
1. 다음 작업 용액(40개 테스트)을 갈색 병에 준비하고 ice.test에 보관하세요.
40ml | 기질 용액 | (A) |
40ml | PIPES-NaOH 완충액, pH 6.5 | (B) |
5ml | 4-AA 솔루션 | (C) |
5ml | EHSPT 솔루션 | (D) |
10ml | 과산화효소 용액 | (E) |
분석 혼합물의 농도 | |
---|---|
PIPES-NaOH 버퍼 | 193mM | < /tr>
NaCl | 19.2mM |
D, L-α-글리세로포스페이트 | 577mM |
4-아미노안티피린 | 1.3mM |
EHSPT | 0.96mM |
과산화효소 | 약 5.3U/ml |
2. 2.5ml의 작업 용액을 큐베토(d=1.0cm)에 피펫으로 넣고 30°2103;에서 평형화합니다. 약 5분 동안.
3. 효소 용액* 0.1ml를 넣고 가볍게 뒤집어 섞으세요.
4. 30°로 온도가 조절된 분광 광도계에서 3~4분 동안 물에 대해 555nm에서 광학 밀도의 증가를 기록하고 곡선의 초기 선형 부분에서 분당 OD를 계산합니다( x394;OD 테스트).
동시에 ΔOD 테스트와 동일한 방법을 사용하여 공백율(ΔOD 공백)을 측정합니다. 효소 용액 대신 효소 희석제가 추가됩니다.
*효소 제제를 얼음처럼 차가운 효소 희석제(F)에 녹입니다. ), 동일한 완충액으로 0.05−0.2U/ml로 희석하여 얼음 위에 보관하세요.
계산
활동량은 다음 공식을 사용하여 계산할 수 있습니다:
활동량(U/ml) ) =
ΔOD/min (ΔOD 테스트−ΔOD 공백)×Vt ×df
29.9×1/2×1.0×Vs
= ΔOD/min×1.739×df
체중 활성도(U/mg) = (U/ml)×1/C< /p>
Vt | : 총 용량(2.6ml) |
Vs | : 샘플량(0.1ml) |
29.9 | : 분석 조건에서 퀴노네이민 염료의 밀리몰 흡광 계수(cm2/마이크로몰) |
1/2 | : H2O2 1몰이 퀴논이민 염료 0.5몰을 생성한다는 사실에 근거한 인수 |
1.0 | : 빛의 경로 길이(cm) |
df | : 희석 인자 |
C | : 용해 시 효소 농도(c mg/ml) |
표 1. Effect of Various Chemicals on L-α-Glycerophosphate oxidase
[The enzyme dissolved in 0.1M PIPES-NaOH buffer, pH7.0 (10U/ml) was incubated at 25& #x2103; for 1hr.]
< th align="center" class="w20p">Chemical Concn.(mM) Residual
activity(%)None - 100 Metal salt Metal salt 2.0 MgCl2 100.0 CaCl2 96.5 BaCl2 99.5 < td>FeSO4 67.4 FeCl3< /td> 73.1 CoCl2 99.5 MnCl2 100.1 ZnSO4 96.4 NiCl2 97.9 AgNO3 93.1 CuSO4 84.7 MIA 2.0 98.4 NaF 2.0 99.4 - li>
Chemical Concn. (mM) Residual
activity(%)NaN3 20 100.2 EDTA 50 99.6 o-Phenanthroline 2.0 101.6 α,& #x3B1;′-Dipyridyl 2.0 100.0 Borate 20 < td>101.8IAA 2.0 98.7 NEM< /td> 2.0 99.8 Hydroxylamine 2.0 100 Triton X-100 0.10% 110.6 Brij 35 0.10% 108.9 Tween 20 0.10% 99.1 Span 20 0.10% 103.7 Na-cholate 0.10% 105.8 SDS 0.05% 3.0 DAC 0.05% 71.8
MIA, Monoiodoacetate; EDTA, Ethylenediaminetetraacetate; IAA, Iodoacetamido;
NEM, N-Ethylmaleimide; SDS, Sodium sulfate; DAC, Dimethylbenzylalkylammonium chloride.
Fig.1. Stability (Powder form)
(Kept under dry form) p>
Fig.2. Stability (Powder form)
(Kept under dry form)
Fig.3. pH-Activity p>
0.1M buffer solution:pH5.0-6.5 ,MES; pH6.5-7.5,PIPES-NaOH;7.5-9.0,Tris-HCl
Fig.4. Temperature activity
(in 0.2M PIPES-NaOH buffer,pH6.5)
Fig.5. pH-Stability
25℃,20hr-treatment with 0.1M buffer solution; pH4.5-6.0,acetate;pH6.0-8.0,K-phosphate; pH8.0-9.0,Tris-HClenzyme concn.:20U/ml,< /p>
Fig.6. Thermal stability
15min-treatment with 0.1M PIPES-NaOH buffer,pH6.5, enzyme concn.:20U/ml
li>
활성 측정법(Japanese)
1 원리
2O2의 양을 정량한다.
2. 정의
하기 조건 하에서 1분 동안 1 마이크로몰 H2O2를 생성하는 효소량을 1단위(U)로 한다.
3. 시약
- 1.5M 글리세로포스페이트 용액 [48.63g의 D,L-α글리세로포스페이트 · 2Na (MW = 324.17)를 약 60ml의 증류수에 용해시킨 후, 4.0N HCl로 pH를 6.5 ± 0.05로 조정 (25 & # x2103;)하고 증류수로 100ml로한다. ](0〜4℃보존으로 2주간은 사용 가능)
- 0.5M PIPES-NaOH 완충액,pH6.5[15.12g의 PIPES(MW=302.36)를 약 60ml의 증류수로 용해하면서, 10N NaOH로 pH를 6.5±0.05로 조정(25℃)하고, 증류수로 100ml로 한다. ] (0 & # x301C; 4 & # x2103; 보관에서 2 주간 사용 가능)
- 28mM 4-AA 수용액 [569mg의 4- 아미노 안티 피린 (MW = 203.25)을 100ml의 증류수에 용해시킨다. . ](갈색병 중 4℃ 보존으로 1주일 사용 가능)
- 20mM EHSPT(TOOS) 수용액 [591mg의 EHSPT(MW=295.3)를 100ml의 증류수에 용해한다. (갈색 병에서 4 & # x2103; 보존에 1 주일 사용 가능)
- POD 용액 [50mg의 퍼 옥시다아제 (POD) (110 풀 프로 갈린 단위 / mg)를 100ml의 증류수에 용해시킨다. ] (갈색 병에서 4℃ 보존)(용시 제조)
효소 용액: 효소 표품을 미리 빙냉한 0.5M NaCl 함유 20mM PIPES -NaOH 완충액, pH 6.5에서 용해 (약 1mg / ml)하고 분석 직전에 동일한 완충액으로 0.05 & # x301C; 0.20U / ml로 희석한다.
4. 절차
1. 하기 반응 혼합물을 제조한다. (갈색 병에서 얼음 냉각 저장)
40ml | 기질 용액 | (A) |
40ml | 완충액< /td> | (B) |
5ml | 4-AA 수용액 | (C) |
5ml | EHSPT 수용액< /td> | (D) |
10ml | POD 수용액 td> | (E) |
2.반응 혼합 2.5 ml를 큐벳 (d = 1.0cm)에 넣고 30 °에서 약 5 분간 예비 가온한다.
3. 효소 용액 0.1ml를 첨가하고, 완만하게 혼화 후, 물을 대조에 30℃으로 제어된 분광 광도계 에서 555nm의 흡광도 변화를 3ĭC;4분간 기록하고, 그 초기 직선 부분으로부터 1분간 당의 흡광도 변화를 구한다(ΔODtest).
4. 맹검은 반응 혼합물 ①에 효소 용액 대신에 효소 희석액 (0.5M NaCl 포함 20mM PIPES-NaOH 완충 액, pH 6.5) 0.10ml를 첨가하고, 상기와 같이 조작을 행하여, 1분간 당의 흡광도 변화를 구한다(ΔODblank).
5. 수식
U/ml= p>
ΔOD/min (ΔOD test−ΔOD blank)×2.60(ml)× 희석 배율
29.9×1/2×1.0×0.1
= ΔOD/min×1.739×희석 배율 | |
U/mg | = U/ml ×1/C |
29.9 | : Quinoneimine 염료의 상기 측정 조건 하에서 밀리몰 분자 흡광 계수(cm2 /micromole) |
1/2 | : 효소 반응에서 생성된 H2O21분자로 형성되는 Quinoneimine 색소는 1/2분자인 것에 의한 계수 |
C | : 용해시 효소 농도(c mg/ml) |