준비 및 사양
성상 | 백색 무정형 분말, 동결건조 | |
---|---|---|
활동량 | GradeⅢ 400U/mg-solid 이상(NAD+) | |
오염물질 | 크레아틴 포스포키나제 | ≤1×10-3% | < /tr>
포스포글루코뮤타제 | ≤1×10-3% | |
6- 포스포글루코네이트 탈수소효소 | ≤5×10-3% | |
포스포글루코스 이성질화효소 | & #x2264;1×10-2% | |
글루타티온 환원효소 | ≤1×10- 3% | |
헥소키나제 | ≤1×10-2% | < /tr>|
미오카나아제 | ≤1×10-2% | |
NADH 산화효소 | ≤1×10-2% | |
NADPH 산화효소 | ≤ ;1×10-2% |
속성
안정성 | −20℃에서 안정적 최소 1년 동안(그림 1) | |
---|---|---|
5℃에서 안정적 최소 6개월 동안(액체 형태)(그림 3) | ||
분자량 | 104,000(약 55,000개의 하위 단위 2개) 1,2) | |
등전점 | 4.6 2) | |
Michaelis 상수 2) | NAD+ 연결 | 1.06×10-4M (NAD+ ), 5.27×10-5M(G-6-P) |
NADP+ 연결됨 | 5.69×10-6M(NADP+), 8.1×10-5M(G-6- P) | |
구조 | 효소 분자에는 시스테인이나 시스틴 잔기가 모두 존재하지 않습니다 1) 및 필수 라이신이 활성 부위에 있는 것으로 나타납니다. 3) | |
억제제 | 아실-CoA,4) ATP,4) 정신 이온 등 (표 1) | |
최적 pH | 7.8(그림 4) | |
최적 온도 | < td colspan="2">50℃(그림 5)||
pH 안정성< /th> | pH 5.5−7.5(30℃, 17시간)(그림 6) | |
열 안정성 | 37℃ 미만 (pH 8.0, 30분)(그림 7) | |
기질 특이성 | NAD+ 또는 NADP+가 보효소 역할을 하며 NAD+의 반응 속도는 NAD+보다 약 1.8배 더 빠릅니다. NADP.+5) D-글루코스는 느리게 반응하지만 D글루코스-6-인산은 효소에 대한 우선적인 기질입니다.6) 과당-6-인산염, 과당1, 6 -디포스페이트 및 리보스-5-인산염은 기질로 간주되지 않습니다.7) |
응용 프로그램
이 효소는 NAD+의 효소적 측정에 유용합니다. (NADP+) 및 G-6-P, 그리고 포스포글루코스 이소머라제, 포스포글루코뮤타제 및 헥소키나제의 활성. 이 효소는 헥소키나제(HXK-311)와 결합하여 포도당을 효소적으로 측정하는 데에도 사용됩니다.
분석
원칙
NADH의 모양은 분광광도법으로 340nm에서 측정됩니다.
단위 정의
아래 설명된 조건에서 하나의 단위는 분당 1마이크로몰의 NADH를 형성합니다.
방법
시약
아. Tris-HCl 완충액, pH 7.8 | 55mM(3.3mM 염화마그네슘 함유) | |
---|---|---|
비. NAD+ 용액 | 60mM(신선하게 준비해야 함) | |
씨. G-6-P 용액 | 0.1M 포도당-6-인산(신선하게 준비해야 함) | |
디. 효소 희석제 | 5mM Tris-HCl 완충액, pH 7.5, 0.1% 소 혈청 알부민 함유. |
절차
1. 다음 반응 혼합물을 큐벳(d=1.0cm)에 준비하고 30°C에서 평형화합니다. 약 5분 동안.
2.7ml | Tris-HCl 완충액 , pH 7.8 | (A) |
0.1ml | NAD + 용액 | (B) |
0.1ml | G・6・P 용액 | (C) |
분석 혼합물의 농도 | |
---|---|
Tris- HCl 버퍼 | 50mM |
G-6-P | < td align="right">3.3mM|
NAD+ | 2.0 mM |
MgCl2 | 3.0 mM |
BSA | 33μg/ml |
2. 효소액 0.1ml*를 넣고 가볍게 뒤집어 섞어주세요.
3. 30°로 온도가 조절된 분광 광도계에서 4~5분 동안 물에 대해 340nm에서 광학 밀도의 증가를 기록합니다. 곡선의 초기 선형 부분에서 분당 OD를 계산합니다(OD 테스트).
동시에 블랭크 비율(Δ #x394;OD 공백) 효소용액 대신 효소희석액을 첨가하는 것을 제외하고는 시험과 동일한 방법을 사용하였다.
*분석 직전에 효소 제제를 얼음처럼 차가운 효소 희석제(D)에 녹이고 동일한 완충액으로 0.05−0.20U/ml로 희석합니다.
계산
활동은 다음 공식을 사용하여 계산할 수 있습니다:
볼륨 활동(U/ml) =
ΔOD/ min(ΔOD 테스트−ΔOD 공백)×Vt×df
6.22×1.0×Vs
= ΔOD/min×4.82×df
웨이트 활동(U /mg) = (U/ml)×1/C
Vt | : 총 부피 (3.0ml) | |
Vs | : 샘플량(0.1ml) | |
: NADH의 밀리몰 흡광계수(cm2/마이크로몰) | ||
1.0 | : 빛의 경로 길이(cm) | |
df | : 희석 계수 | td>|
C | : 용해 시 효소 농도(c mg/ml) |
Concn.(mM) | Residual activity(%) | |
---|---|---|
None | - | 100 |
Metal salt | 2.0 | |
AgNO3 | < /td> | 86 |
Ba(OAc)2 | 51 | |
CaCl2 | 90 | |
Cd(OAc)2 sub> | 74 | |
CoCl 2 | 80 | |
CuSO 4 | 66 | |
FeCl3 | 0 | |
FeSO4 | 1 | |
HgCl2 | 84 | |
MgCl2 | 90 | < /tr>|
MnCl2 | 89 td> | |
NiCl2 | 89 | |
Pb(OAc)2 | 3 | |
Zn(OAc)2 | 67 | |
ZnSO4 | 53 | |
KF | 2.0< /td> | 93 |
NaF | 20.0 | < td align="left">98|
NaN3 | 20.0< /td> | 93 |
Chemical | Concn.(mM) | Residual activity(%) |
---|---|---|
NEM | 2.0 | 91 |
PCMB | 2.0 | 96 |
MIA | 2.0 | 14 |
Iodoacetamide | 2.0 | 0 |
EDTA | 5.0 | 94 |
(NH4 sub>) 2SO4 | 20.0 | 98 |
Borate | 20.0 | 95 |
o-Phenanthroline | 2.0 | 93 |
α,α′-Dipyridyl | 2.0 | 95 |
Urea | 2.0 | 93 |
Guanidine | 2.0 | 93 |
Hydroxylamine | 2.0 | 91 |
Na-cholate | 1.0% | 102 |
Triton X-100 | 1.0% | 100 |
Brij 35 | 1.0% | 4 |
SDS | 0.1% | 0 |
Tween 20 | 0.1% | 101 |
Span 20 td> | 0.1% | 99 |
DAC | < td align="left">0.1%0 |
Ac, CH3CO; NEM, N-Ethylmaleimide; PCMB, p-Chloromercuribenzoate; MIA, Monoiodoacetate; EDTA, Ethylenediaminetetraacetate; SDS, Sodium dodecyl Dimethylbenzylalkylammoniumchloride.
Fig.1. Stability (Powder form)
(kept under dry conditions)
Fig.2. Stability (Powder form)
(kept under dry conditions)
Fig.3. Stability (Liquid form at 5℃)
enzyme concentration:5,000U/ml composition:3.2M ammonium sulfate,pH6.0
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Fig.4. pH- 활동
30℃ in the following buffer solution: pH5.7-6.8, 15mM Veronal-CH3COONaHCI;pH6.8-8.5,50mM Tris-HCI; pH8.5-9.5, 50mM glycine-NaOH
Fig.5. Temperature activity
(in 50mM Tris-HCI buffer, pH7.8)< /p>
Fig.6. pH-Stability
30℃, 17hr-treatment with the following buffer solution: pH5.0-7.8, 30mM VeronalCH3 COONa-HCI;pH7.5-8.5, 0.1M Tris-HCI; pH8.5-9.5,0.1M glycine-NaOH
Fig.7. Thermal stability
30min-treatment with 5.0mM glycineNaOH buffer, pH8.0, containing 0.1% of bovine serum albumin
활성 측정법(Japanese)
1. 원리
NADH의 생성량을 340nm의 흡광도 변화로 측정한다.
2. 정의
하기 조건으로 1분간에 1마이크로몰의 NADH를 생성하는 효소량을 1단위(U)로 한다.
3. 시약
- 55mM Tris-HCl 완충액, pH 7.8(3.3mM MgCl2 포함)
- 60 mM NAD+ 수용액(사용시 준비)
- 0.1 M G-6-P(glucose-6-phosphate ) 수용액 (용시 조제)
효소 용액: 효소 표품을 미리 빙냉한 0.1% 소혈청 알부민(BSA)을 포함한 5mM Tris-HCl 완충액 , pH 7.5에서 용해시키고 분석 직전에 동일한 완충액으로 0.05 & # x301C; 0.20U / ml로 희석한다.
4. 절차
1. 하기 반응 혼합물을 큐벳(d=1.0cm)으로 제조 30 ~ 약 5 분간 예비 가온한다.
2.7ml | Tris-HCl 완충액 | < td class="w20p">(A)|
0.1ml | NAD+ sup>수용액 | (B) |
0.1ml | 기질 용액 | (C) |
2. span> 효소 용액 0.1ml를 첨가하고, 완만하게 혼화 후, 물을 대조에 30℃으로 제어된 분광 광도계로 340nm의 흡광도 변화를 4〜5분간 기록하고, 그 초기 직선 부분으로부터 분당 흡광도 변화를 구한다(ΔODtest).
3. 맹검은 효소 용액 대신 효소 희석액 (0.1% BSA를 포함하는 5 mM Tris-HCl 완충액, pH 7.5) 0.1ml를 첨가하고 상기와 동일한 조작을 행하여 1 분당 흡광도 변화를 구한다 (ΔODblank).
5. 수식
U/ml= p>
ΔOD/min (ΔOD test−ΔOD blank)×3.0(ml)× 희석 배율
6.22×1.0×0.1(ml)
= ΔOD/min×4.82×희석 배율 | |
U/mg | = U/ml× 1/C |
6.22 | : NADH의 밀리몰 분자 흡광 계수(cm2/micromole) | < /tr>
1.0 | : 광로 길이(cm) |
C | : 용해 시 효소 농도 (c mg/ml) |