< img src="/inday_fileinfo/img/v520240422194449.">
준비 및 사양
(안정제 약 20% 함유)
속성
안정성 | −20℃에서 안정적 최소 1년 동안 (그림 1) |
---|---|
분자량 | 대략. 95,000 |
등전점 | 4.1±0.1 |
미카엘리스 상수 | 2.84×10-3M(콜린), 5.33×10-3M(베타인 알데히드) | tr>
구조 | 1 mol의 FAD가 1 mol의 효소 8) |
억제제 | p-클로로머쿠리벤조에이트, Cu++,Co++,Hg++ sup>,Ag+ |
최적 pH | 8.0−8.5(그림 4) |
최적 온도 | 40−45℃(그림 5) |
pH 안정성 | pH 7.0−9.0(30℃, 2시간 )(그림 6) |
열 안정성 | 37℃ 미만 ; (pH 7.5, 10분)(그림 7) |
다양한 화학물질의 영향 | (표 1) |
이 효소는 포스포리파제 D와 결합 시 인지질의 효소 측정 및 임상 분석에서 콜린 에스테라제 활성에 유용합니다.9〜11 )
분석
원칙
퀴노네이민 염료의 외관은 분광광도법으로 500nm에서 측정됩니다.
단위 정의
아래 설명된 조건에서 1개 단위는 분당 1마이크로몰의 과산화수소(퀴논이민 염료의 0.5마이크로몰)를 형성합니다.
< /div>방법
시약
A. 염화콜린 용액 | 2.1%[염화콜린 2.1g/Tris-HCl 완충액(D) 100ml](신선하게 준비해야 함) |
---|---|
B. 4-AA 용액 | 1.0%(4-아미노안티피린 1.0g/H2O 100ml)(갈색병에 4℃ 보관) | < /tr>
C. 페놀 용액 | 1.0%(페놀 1.0g/H2O 100ml)(갈색 병에 담아 4°C에 보관) | 디. Tris-HCl 완충액 | 0.1M Tris-HCl 완충액, pH 8.0 [Tris(MW=121.14) 12.1g을 약 800ml의 H2O에 녹이고 조정한 후 25℃에서 pH를 8.0으로; 2.0N HCl의 경우 H2O로 최대 1,000ml를 채웁니다.] |
E. 효소 희석제 | 10mM Tris-HCl 완충액, pH 8.0 contg. 2mM EDTA 및 1.0% KCl. |
조작
1.사용 전 다음의 작업액(100ml)을 갈색빛으로 준비하고 갈색병에 얼음보관하세요 .
97ml | 기질 용액 | (A)< /td> |
---|---|---|
1.0ml | 4-AA 용액 | (B) |
2.0ml | 페놀 용액 | (C) |
5.0mg | 과산화효소 고추냉이 (110 퍼푸로갈린 단위/mg) (Toyobo GradeIII) |
분석 혼합물의 농도 | |
---|---|
트리스 완충액 | 97 mM |
염화콜린 | < td align="right">0.14M|
EDTA | 33μM |
KCI | 2.2 mM |
4-아미노안티피린< /th> | 0.48mM |
페놀 | 2.1mM |
POD | ca.4.92U/ml |
2.작업 용액 3.0ml를 큐벳(d=1.0cm)에 피펫팅하여 평형화합니다. 37℃ 약 5분 동안.
3.효소 용액* 0.05ml를 첨가하고 가볍게 뒤집어 섞습니다.
4.37°로 온도 조절된 분광 광도계에서 작업 용액에 대해 3~4분 동안 500nm에서의 광학 밀도 증가를 기록하고 당 OD를 계산합니다. 곡선의 초기 선형 부분으로부터 1분 후.
*효소 제제를 얼음처럼 차가운 Tris-HCl 완충액에 녹입니다. (D) 효소 희석제(E)를 사용하여 0.1−0.5U/ml로 희석합니다.
계산
활동량은 다음 공식을 사용하여 계산할 수 있습니다:
활동량(U/ml) ) =
ΔOD/min×Vt×df
12.0×1/2×1.0×Vs
= ΔOD/min×10.17×df
체중 활동량(U/mg) = (U/ml)×1/C
Vt | : 총 용량(3.05ml) |
Vs | : 샘플 용량(0.05ml) |
12.0 | : 분석 조건에서 퀴노네이민 염료의 밀리몰 흡광 계수(cm2/micromole) |
1/2 | : H2O2 1몰이 퀴논이민 염료 0.5몰을 생성한다는 사실을 바탕으로 한 인수입니다. |
1.0 | : 광선 길이(cm) |
df | : 희석 계수 |
C | : 용해 시 효소 농도(c mg/ml) |
참조
1)PJG Mann 및 JHQuastel; Biochem.J.,31, 869(1937).
2)PJG Mann 외; Biochem.J.,32, 1024(1938).
3)HSShieh; Can.J.Microbiol., 10, 837(1964).
4)HSShieh; Ibid., 11, 375 (1965).
5)GJJKortstee; Arch.Mikirobiol., 71, 235 (1970).
6)S.Ikuta, K.Matuura, S.Imamura, H.Misaki, Y.호리우티; J.Biochem., 82, 157(1977).
7)S.Ikuta, S.Imamura, H.Misaki 및 Y.Horiuti; J.Biochem., 82, 1741(1977).
8)M.Ohta-Fukuyama, Y.Miyake, S.Emi 및 T. 야마노; J.Biochem., 88, 197(1980).
9)M.Takayama 외; 클린. 침. Acta, 79, 93(1977).
10)K.Sugawara 및 A.Kihara; Eisei Kensa, 27(1), 106(1978).
11)H.Okabe 외; Clin.Chim.Acta, 80, 87(1977).
표 1. Effect of Various Chemicals on Choline oxidase
[The enzyme dissolved in 10mM Tris-HCl buffer, pH 8.0 contg. 2mM EDTA and 1.0% KCl (5U/ml) was incubated with at 25℃ for 1hr.]
Chemical Concn.(mM) Residual activity(%) None - 100 Metal salt 2.0 MgCl2 87 CaCl2 92< /td> Ba(OAc)2 89 FeCl3 87 CoCl2 89 MnCl2 91 ZnCl2 88 CdCl2 92 NiCl2< /sub> 91 CuSO4 td> 92 Pb(OAc)2 87 AgNO3 80 HgCl 2 48 2-Mercaptoethanol 2.0 td> 90 < /table>PCMB 1.0 13 Chemical Concn.(mM) Residual activity (%) < tr>MIA 2.0 87 NEM 2.0 100 IAA 2.0 < td>95Hydroxylamine 2.0 77 EDTA< /td> 5.0 92 o-Phenanthroline 2.0 90 td> α,α′-Dipyridyl 1.0 91 Borate< /td> 50 94 NaF 2.0 92 NaN3 2.0 92 Triton X-100 0.10% 96 Brij 35 0.10% < td>92Tween 20 0.10% 95 Span 20 0.10% 94 Na-cholate 0.10% < td>96SDS 0.05% 95 DAC 0.05% 91 Ac, CH3CO;PCMB, p-Chloromercuribenzoate; MIA, Monoiodoacetate; NEM, N-Ethylmaleimide; IAA, Iodoacetamide;EDTA, Ethylenediaminete SDS, Sodium dodecyl sulfate; DAC, Dimethylbenzylalkylammonium chloride.Fig.1. Stability (Powder form)
(kept under dry conditions)
Fig.2. Stability (Powder form)
(kept under dry conditions)
-
Fig.3. Stability (Liquid form at 37℃)
enzyme concentration: 1.0mg/ml buffer composition: 0.1M K-phosphate buffer, pH7.5
Fig.4. pH-Activity
(37℃, in 50mM K-phosphate buffer)
- < p class="img imgAuto txtCenter">
Fig.5. Temperature activity< /p>
(in 50mM K-phosphate buffer,pH7.5)
Fig.6. pH-Stability
30 x2103;, 2hr-treatment with 50mM buffer solution:pH6.0-9.0, K-phosphate; pH9.0-10.0, glycine-NaCl-NaOH.
Fig.7. Thermal stability
15min-treatment with 50mM K-phosphate buffer, pH7.5
활성 측정법(Japanese)
1. 원리
2. 정의
하기 조건 하에서 1분 동안 1 마이크로몰 H2O2를 생성하는 효소량을 1단위(U)로 한다.
3. 시약
- 2.1% 염화콜린 용액(2.1g의 염화콜린을 0.1MTris-HCl 완충액, pH 8.0으로 용해시켜 100ml로한다) ;보존)
- 1.0% 페놀 수용액(1.0g의 페놀을 증류수에 용해하여 100ml로 한다)(갈색병 중에서 4℃보존)
- 0.1M Tris-HCl 완충액, pH 8.0〔12.1g의 트리스(MW=121.14)를 약 800ml의 증류수에 용해하고, 2.0NHCl로 pH8.0(25℃)으로 조제한 후 1000ml로 한다〕 /li>
효소 용액: 효소 표품을 미리 얼음 냉각한 0.1M Tris-HCl 완충액, pH 8.0에 용해시키고, 2.0mM EDTA와 1.0% KCl을 포함 10mM Tris-HCl 완충액, pH 8.0에서 0.1-0.5 U / ml로 희석한다.
4. 절차
1. 아래 반응 혼합물을 준비 한다(갈색병에서 빙냉 보존).
97.0ml 기질 용액 (A)< /td> 1.0ml 4-AA 수용액액 (B) 2.0ml 페놀 수용액 (C) 5.0ml peroxidase (110 풀 프로 갈린 단위 / mg) 2. 반응 혼합물 3.0ml를 큐벳 (d=1.0cm) 37 ~ 약 5 분간 예비 가온한다.
3. 효소 용액 0.05ml를 첨가하고, 천천히 혼화하고, 반응 혼액을 대조에 37℃로 제어된 분광광도 합계로 500nm의 흡광도 변화를 3~4분간 기록하고, 그 초기 직선 부분으로부터 분당 흡광도 변화를 구한다(ΔOD/min).
5. 수식
U/ ml =
ΔOD/min×3.05(ml)
12.0×1/2×1.0×0.05(ml)
×희석 배율
= ΔOD/min×10.17×희석 배율 U/mg =U/ml×1/C 12.0 : Quinoneimine 염료의 상기 측정 조건 하 에서 밀리몰 분자 흡광 계수(cm2/micromole) 1/2 : 산소 반응에서 생성된 H 2O2의 1분자의에서 형성하는 Quinoneimine 색소는 1/2분자인 것에 의한 계수. 1.0 : 광로 길이(cm) C : 용해시 효소 농도 (c mg/ml)