가격표
용도
● PCR
설명
KOD-Plus-Neo는 고정확성 PCR 효소 KOD-Plus-시리즈의 기술에 새롭게 개발한 「신장 인핸서」를 응용함으로써 높은 정확성(Taq DNA polymerase의 약 80배)을 유지하면서 , 미량의 주형 DNA로부터의 증폭이나 긴 타겟의 증폭 효율을 현격히 향상시킨 효소입니다.
특징
● 미량의 주형 DNA로부터 정확하고 고효율의 증폭이 가능 신장 인핸서 기술을 응용함으로써 미량의 주형 DNA에서도 고정확하고 고효율로 목적 유전자를 증폭할 수 있게 되었습니다. 본 효소는 높은 정확성(Taq의 약 80배)을 나타내며, 낮은 카피수의 주형으로부터도 정확하게 목적 유전자를 증폭할 수 있습니다.
* PCR 에러율은 각 효소에서 인간 게놈 DNA를 주형으로 β-globin 유전자 (2.4kb)의 증폭을 실시하고, PCR 산물을 TA 클로닝 후 96 클론을 시퀀싱 해석하여 측정했습니다.
● 핫 스타트로 PCR 성능 향상
2종류의 항KOD 항체를 효소에 혼합함으로써, 비특이 반응의 원인이 되는 상온하에서의 Polymerase 활성과 3'→5'Exonuclease 활성을 억제하고 있습니다. 항체는 PCR의 첫번째 변성 단계에서 비활성화되고 증폭 반응에는 영향을 미치지 않는다.
● 신장 시간을 단축 <30sec./kb>(긴 타겟으로 보다 편리하게 되었습니다)
신장 시간을 기존 제품의 60sec./kb에서 30sec./kb로 단축. 긴 타겟으로 더 편리하게되었습니다.
●장쇄 타깃의 증폭 종래품보다 신장성이 향상해, 다양한 길이의 타깃을 증폭할 수 있습니다. 게놈 DNA로 24kb까지의 증폭을 확인하고 있습니다.
● 다양한 프라이머로 동일 온도 사이클 조건을 실현
20mer 이상의 프라이머(Tm값>63℃)에서는 우선 2스텝 사이클을 시험해 주십시오. 사이클 조건 검토는 필요하지 않습니다. (기본 반응 조건 참조)
*Tm값은 최근 접염기 대법(Nearest Neighbor Method)을 이용하여 계산한 값을 이용하고 있습니다.
원리
KOD DNA polymerase는 강한 3'→5'엑소뉴클레아제 활성(교정 활성)을 가지고 정확하게 타겟 서열을 증폭할 수 있기 때문에 클로닝용 PCR 효소로 호평을 받고 있습니다.
그러나 고정확성 PCR 효소는 20~30 사이클 이후 증폭이 지속되지 않는 <플라토 현상>이 나오기 쉽다고 합니다.
KOD-Plus-Neo는 고정확성 PCR 효소 KOD-Plus-시리즈의 기술에 당사에서 새롭게 개발한 "신장 인핸서"를 응용하여 Taq의 약 80배라는 KOD -Plus-시리즈의 높은 정확도 성을 유지하면서, <플라토 현상>을 억제함으로써, 미량의 주형 DNA로부터의 증폭이나 긴 타겟의 증폭 효율을 현격히 향상시키는 것에 성공했습니다.
실시예
1. Total RNA에서 전장 ORF 증폭
HeLa cell 유래 Total RNA 1㎍으로부터 합성한 cDNA 약 50ng을 사용하여, 다양한 단백질 키나아제의 ORF(open reading frame)의 전장을 증폭했습니다.
사이클은 각 효소의 최적 조건에서 30 사이클 실시했습니다.
그 결과, KOD-Plus-Neo로 증폭한 경우에만 모든 유전자에서 명확한 증폭 산물을 얻을 수 있어 모든 ORF를 신속하게 클로닝할 수 있었다.
2. β-globin 유전자 상의 각 영역에서의 증폭 효율·신장성의 비교
Human genomic DNA 50ng을 이용하여 다양한 크기의 β-globin 유전자의 증폭을 실시했습니다. 반응은 각 PCR 효소의 권장 조건에 따라 동일한 사이클 수로 실시했다.
그 결과, KOD-Plus-Neo를 사용한 경우에만 17.5kb까지의 명확한 증폭을 확인할 수 있었다. 또한 17.5kb 이하의 증폭에서도 타사 PCR 효소를 크게 상회하는 수율이 인정되었습니다.
3. 장쇄 타겟의 증폭
인간 게놈 DNA(200ng)를 템플릿에 다양한 프라이머 농도로 β-globin 유전자(17.5kb), tPA(Human tissue-type plasminogen activator) 유전자(24.0kb)의 증폭을 실시했습니다. 그 결과 장쇄 타겟의 증폭은 프라이머 농도를 낮추면 증폭량이 증가하는 것으로 나타났다.
이와 같이 10kb 이상의 장쇄 타겟을 증폭하는 경우는 프라이머 농도를 0.15μM(종농도)로 이용해 주십시오. 증폭량이 향상될 수 있습니다.
기타 실시예
참고 문헌
1) M. Takagi et al., Appl. Environ. Microbiol. , 63 : 4504-4510 (1997)
2) H. Hashimoto et al., J. Biochem. (Tokyo), 125 : 983-986 (1999)
3) H. Mizuguchi et al., J. Biochem . (Tokyo), 126 : 762-768 (1999)
4) M. Nishioka et al., J. Biotechnol ., 88 : 141-149 (2001)
5) H. Hashimoto et al., J. Mol. Biol. , 306 : 469-77 (2001)
6) T. Imanaka et al., J. Chin. Inst.Chem. Engrs. , 32 : 277-288 (2001)
제품 내용
KOD -Plus- Neo (1U/μL) 200μL×1개
10×PCR Buffer for KOD -Plus- Neo [KOD-4B] 1mL×1개
25mM MgSO 4 [KOD-2S] 1mL×1개
2mM dNTPs [NTP-201] 1mL×1개
※50μL로 반응을 실시한 경우, 200회용으로서 사용하실 수 있습니다.모양:
50mM Tris-HCl (pH8.0)
25mM KCl
0.1mM EDTA
1mM DTT
0.05% Tween ® -20
0.05% Nonidet ® P-40
50% Glycerol
활동 정의:
75℃ 활성 측정 조건에서 30분간에 10nmol의 전체 뉴클레오티드를 산 불용성 분획에 도입하는 효소량을 1U로 한다.
순도 본 효소 15U와 pBR322 1㎍을 75℃에서 4시간 반응시켜도 전기영동 패턴은 변화하지 않는 것을 확인하고 있습니다.
기원:
E.coli 재조합체
- 주의사항
PCR에는 제품에 첨부되어 있는 dNTPs 또는 별매의 dNTPs Mixture (2mM) [NTP-201]을 사용해 주십시오. 다른 dNTPs에서는 충분한 성능을 얻지 못할 수 있습니다.
- 기본 반응 조건
멸균 증류수 X μL
10×PCR Buffer for KOD -Plus- Neo 5μL
2mM dNTPs 5μL
25mM MgSO 4 3μL
10pmol/μl Primer F 1.5μL
10pmol/μl Primer R 1.5μL
KOD -Plus- Neo (1.0U/μl) 1μL
Genomic DNA ~200ng
Plasmid DNA ~ 50ng
cDNA ~ 200ng (RNA 상당)
Total 50μL
<2 스텝 사이클> *
94 ℃ 2min.
↓
98 ℃ 10 초.
68℃ 30sec./kb 25~45 cycles
<3 스텝 사이클> *
94 ℃ 2min.
↓
98 ℃ 10 초.
Tm ℃ 30 초.
68℃ 30sec./kb 25~45 cycles
<스텝다운 사이클> *
94℃, 2min.
↓
98 ℃, 10 초.
74℃, 30sec./kb 5 cycles
↓
98 ℃, 10 초.
72℃, 30sec./kb 5 cycles
↓
98 ℃, 10 초.
70℃, 30sec./kb 5 cycles
↓
98 ℃, 10 초.
68℃, 30sec./kb 15~30 cycles
↓
68℃, 7min.
※프라이머의 Tm값이 63℃보다 높은 경우는 2스텝 사이클로 실시합니다.
Tm 값이 63°C 이하이고 2단계에서 증폭이 보이지 않으면 3단계 사이클을 시도하십시오.
증폭 산물에 엑스트라 밴드 또는 스미어가 보이면 스텝 다운 사이클을 시도하십시오.
※ 프라이머의 Tm값의 계산은 최근 접염기 대법(Nearest Neighbor method)을 이용하고 있습니다. 프라이머의 Tm값 계산표(EXCEL)는, 이쪽 으로부터 다운로드 받을 수 있습니다.
- 원포인트 조언
●PCR 산물의 클로닝 본 효소의 PCR 산물은 평활화되어 있어, 평활 말단 클로닝법에 의해 클로닝할 수 있습니다.
그 때 벡터측을 탈인산화 처리하고 있는 경우, PCR 산물의 인산화를 실시하거나, 5'인산기가 붙은 프라이머를 사용할 필요가 있습니다.
또한, 본 효소의 PCR 산물은 평활화되어 있기 때문에 직접 TA 클로닝할 수 없습니다.
전용 TA 클로닝 키트 "TArget Clone TM -Plus-"를 사용하십시오.
● PCR 조건의 설정에 대해서 효소의 표준 사용량은 50μL의 계에 대해 1U로 해 주십시오.
신장 반응은 68℃에서 실시하고 타겟 1kb에 대해 1min.을 표준으로 합니다. 스메어링이 일어나고 있는 경우는 MgSO 4 의 농도를 낮추고, 증폭이 보이지 않는 경우는 MgSO 4 농도를 올려 검토한다.
●GC 리치인 주형의 경우 반응액에 DMSO를 최종 농도 2~5% 정도 첨가함으로써 개선되는 경우가 있습니다.
●RT 반응액을 주형으로 하는 경우
RT 반응액의 대량의 반입은 본 효소에 의한 PCR 반응을 저해하는 경우가 있습니다.
RT반응액의 PCR로의 반입은 PCR반응액의 1/25이하(바람직하게는 1/50이하)를 추천합니다.
이 경우, RT 반응액으로부터의 Mg2 + 나 dNTPs의 반입에 대해서는 고려할 필요는 없고, 기본 반응 조건에 따라 본 효소의 첨부된 dNTPs와 MgSO4 를 첨가해 주시면 문제 없습니다.
● 프라이머 설계
3'측에 미스매치가 있는 프라이머는 본 효소에 의해 교정을 받을 수 있습니다.
※ 프라이머의 Tm값의 계산은 최근 접염기 대법(Nearest Neighbor method)을 이용하고 있습니다. 프라이머의 Tm값 계산표(EXCEL)는, 이쪽 으로부터 다운로드할 수 있습니다. 이노신을 포함하는 프라이머의 Tm 값은 이 방법으로 계산할 수 없습니다.
●DNA 말단 평활화에 이용하는 경우는 이쪽을 봐 주세요.
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제품 내용
KOD -Plus- Neo (1U/μL) 200μL×1개
10×PCR Buffer for KOD -Plus- Neo [KOD-4B] 1mL×1개
25mM MgSO 4 [KOD-2S] 1mL×1개
2mM dNTPs [NTP-201] 1mL×1개
※50μL로 반응을 실시한 경우, 200회용으로서 사용하실 수 있습니다.모양:
50mM Tris-HCl (pH8.0)
25mM KCl
0.1mM EDTA
1mM DTT
0.05% Tween ® -20
0.05% Nonidet ® P-40
50% Glycerol
활동 정의:
75℃ 활성 측정 조건에서 30분간에 10nmol의 전체 뉴클레오티드를 산 불용성 분획에 도입하는 효소량을 1U로 한다.
순도 본 효소 15U와 pBR322 1㎍을 75℃에서 4시간 반응시켜도 전기영동 패턴은 변화하지 않는 것을 확인하고 있습니다.
기원:
E.coli 재조합체
- 주의사항
PCR에는 제품에 첨부되어 있는 dNTPs 또는 별매의 dNTPs Mixture (2mM) [NTP-201]을 사용해 주십시오. 다른 dNTPs에서는 충분한 성능을 얻지 못할 수 있습니다.
- 기본 반응 조건
멸균 증류수 X μL
10×PCR Buffer for KOD -Plus- Neo 5μL
2mM dNTPs 5μL
25mM MgSO 4 3μL
10pmol/μl Primer F 1.5μL
10pmol/μl Primer R 1.5μL
KOD -Plus- Neo (1.0U/μl) 1μL
Genomic DNA ~200ng
Plasmid DNA ~ 50ng
cDNA ~ 200ng (RNA 상당)
Total 50μL
<2 스텝 사이클> *
94 ℃ 2min.
↓
98 ℃ 10 초.
68℃ 30sec./kb 25~45 cycles
<3 스텝 사이클> *
94 ℃ 2min.
↓
98 ℃ 10 초.
Tm ℃ 30 초.
68℃ 30sec./kb 25~45 cycles
<스텝다운 사이클> *
94℃, 2min.
↓
98 ℃, 10 초.
74℃, 30sec./kb 5 cycles
↓
98 ℃, 10 초.
72℃, 30sec./kb 5 cycles
↓
98 ℃, 10 초.
70℃, 30sec./kb 5 cycles
↓
98 ℃, 10 초.
68℃, 30sec./kb 15~30 cycles
↓
68℃, 7min.
※프라이머의 Tm값이 63℃보다 높은 경우는 2스텝 사이클로 실시합니다.
Tm 값이 63°C 이하이고 2단계에서 증폭이 보이지 않으면 3단계 사이클을 시도하십시오.
증폭 산물에 엑스트라 밴드 또는 스미어가 보이면 스텝 다운 사이클을 시도하십시오.
※ 프라이머의 Tm값의 계산은 최근 접염기 대법(Nearest Neighbor method)을 이용하고 있습니다. 프라이머의 Tm값 계산표(EXCEL)는, 이쪽 으로부터 다운로드 받을 수 있습니다.
- 원포인트 조언
●PCR 산물의 클로닝 본 효소의 PCR 산물은 평활화되어 있어, 평활 말단 클로닝법에 의해 클로닝할 수 있습니다.
그 때 벡터측을 탈인산화 처리하고 있는 경우, PCR 산물의 인산화를 실시하거나, 5'인산기가 붙은 프라이머를 사용할 필요가 있습니다.
또한, 본 효소의 PCR 산물은 평활화되어 있기 때문에 직접 TA 클로닝할 수 없습니다.
전용 TA 클로닝 키트 "TArget Clone TM -Plus-"를 사용하십시오.
● PCR 조건의 설정에 대해서 효소의 표준 사용량은 50μL의 계에 대해 1U로 해 주십시오.
신장 반응은 68℃에서 실시하고 타겟 1kb에 대해 1min.을 표준으로 합니다. 스메어링이 일어나고 있는 경우는 MgSO 4 의 농도를 낮추고, 증폭이 보이지 않는 경우는 MgSO 4 농도를 올려 검토한다.
●GC 리치인 주형의 경우 반응액에 DMSO를 최종 농도 2~5% 정도 첨가함으로써 개선되는 경우가 있습니다.
●RT 반응액을 주형으로 하는 경우
RT 반응액의 대량의 반입은 본 효소에 의한 PCR 반응을 저해하는 경우가 있습니다.
RT반응액의 PCR로의 반입은 PCR반응액의 1/25이하(바람직하게는 1/50이하)를 추천합니다.
이 경우, RT 반응액으로부터의 Mg2 + 나 dNTPs의 반입에 대해서는 고려할 필요는 없고, 기본 반응 조건에 따라 본 효소의 첨부된 dNTPs와 MgSO4 를 첨가해 주시면 문제 없습니다.
● 프라이머 설계
3'측에 미스매치가 있는 프라이머는 본 효소에 의해 교정을 받을 수 있습니다.
※ 프라이머의 Tm값의 계산은 최근 접염기 대법(Nearest Neighbor method)을 이용하고 있습니다. 프라이머의 Tm값 계산표(EXCEL)는, 이쪽 으로부터 다운로드할 수 있습니다. 이노신을 포함하는 프라이머의 Tm 값은 이 방법으로 계산할 수 없습니다.
●DNA 말단 평활화에 이용하는 경우는 이쪽을 봐 주세요.
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